Terminez l'opération-par-étape de la biopsie par aspiration à l'aiguille fine (FNA) et de la ponction percutanée à l'aiguille de Chiba

Un guide pratique pour les médecins interventionnels

https://radiopaedia.org/articles/chiba-aiguille

L'utilisation clinique duAiguille de Chibadoit suivre strictement les principes d’asepsie et être réalisée sous guidage d’image (échographie/TDM/fluoroscopie). Ce qui suit détaille la procédure opératoire standard en utilisant comme exemple la biopsie par aspiration à l'aiguille fine guidée par tomodensitométrie- ou par échographie-d'organe solide (foie/poumon/rein/thyroïde, etc.).

1. Évaluation et préparation préopératoires

① Patient assessment: Verify indications and rule out contraindications - check complete blood count, coagulation panel (PT/APTT), platelet count (preferably >50×10⁹/L), fonction rénale (si contraste), ECG ; se renseigner sur les antécédents d'allergies (iode/anesthésiques locaux), l'état de grossesse ; soyez prudent en cas de suspicion de maladie hydatique, d'hémangiomes, d'emphysème sévère ou de patients incapables de coopérer avec l'apnée-. ② Examen des images : examinez les images tomodensitométriques/IRM/échographie récentes pour déterminer la taille, la forme, l'apport sanguin de la lésion, la répartition des zones nécrotiques, le plan de ponction optimal et le trajet de l'aiguille (en évitant les gros vaisseaux sanguins, les bronches, le tractus gastro-intestinal, la vésicule biliaire, les faisceaux neurovasculaires intercostaux). ③ Consentement éclairé : expliquez le but, le processus, les complications possibles (hémorragie, pneumothorax, infection, ensemencement rare de voies d'aiguille) et les options alternatives au patient/à sa famille, et signez le formulaire de consentement éclairé. ④ Préparation de l'instrument : sélectionnez une aiguille Chiba 20G-23G (généralement 21G ou 22G, longueur 15-20 cm), des seringues de 5 à 10 ml, un porte-aiguille, des gants stériles, un champ, un désinfectant povidone-iode/chlorhexidine, 2 % de lidocaïne, 10 % de formaldéhyde ou 95 % de fixateur d'éthanol (pour la cytologie). frottis), lames de verre, manchon de protection de l'aiguille et, si nécessaire, aiguille de guidage coaxiale et microfil 0,018″.

2. Positionnement et anesthésie

Placez le patient dans une position appropriée (en décubitus dorsal/couché/latéral) pour rapprocher la lésion de la surface du corps avec un chemin sûr. Pour le guidage échographique, appliquez du gel de couplage sur la sonde et recouvrez-la d'un couvercle stérile, déterminez le point d'entrée optimal et marquez-le ; pour le guidage CT, effectuez un balayage local pour déterminer le point de marquage de la grille de surface et l’angle/profondeur de l’aiguille. Désinfecter avec de la povidone-iodée d'un diamètre supérieur ou égal à 15 cm pendant 2 à 3 passages et poser un champ stérile. Utilisez de la lidocaïne à 2 % pour l'infiltration des couches intradermiques et sous-cutanées étape par étape jusqu'à la capsule d'organe (la biopsie du foie/des reins nécessite une anesthésie de la couche capsulaire pour une meilleure analgésie), en faisant attention à simuler la direction du trajet de la biopsie.

3. Ponction et échantillonnage (points techniques clés du FNA)

Sous surveillance par imagerie, l'opérateur tient la seringue (attachée à la queue de l'aiguille de Chiba) avec la main non-dominante et saisit le corps de l'aiguille près de la racine (à environ 2 à 3 cm de la pointe de l'aiguille) avec la main dominante. Pénètre rapidement la peau et les tissus superficiels selon l'angle prédéterminé. Ralentir à l’approche de l’organe cible, et confirmer en temps réel que la pointe de l’aiguille atteint le bord de la lésion → poursuivre sa progression vers l’intérieur de la lésion (en évitant les zones de nécrose centrale/calcification). Après avoir vérifié que la pointe de l'aiguille est dans une partie solide, retirez le piston de la seringue pour créer une pression négative (environ 2 à 5 ml de pression négative, jamais trop importante pour éviter de prélever trop de sang et de diluer les cellules). Déplacez l'aiguille dans un petit mouvement en forme d'éventail-ou rotatif au sein de la lésion (généralement 2 à 3 fois, chacune d'une course d'environ 0,5 à 1 cm, durant 1 à 3 secondes), tout en maintenant une légère pression négative. Relâchez ensuite la pression négative (repoussez le piston de la seringue dans sa position d'origine ou desserrez-le), faites une brève pause sur place et retirez-le le long du trajet d'origine. Tout au long du processus, demandez au patient de retenir sa respiration selon le rythme prédéfini (généralement à la fin de l'inspiration ou à la fin d'une respiration calme pendant 2 à 5 secondes) pour réduire le déplacement de la pointe de l'aiguille.

4. Manipulation des échantillons

Immédiatement après le retrait, soufflez doucement l'aspiration de la lumière de l'aiguille sur une lame de verre. Utilisez une autre lame à un angle de 45 degrés pour réaliser un mince frottis et fixez-le immédiatement dans de l'éthanol à 95 % ou dans une solution de Carnoy pour la cytologie. Si l'aspiration contient des fragments de tissus, ils peuvent également être placés dans du formol tamponné neutre à 10 % pour l'histologie (mais les aiguilles fines n'obtiennent généralement que des échantillons cytologiques). Pour les ganglions lymphatiques ou la thyroïde, 1 à 2 prélèvements répétés peuvent être effectués pour améliorer la positivité.

5. Soins postopératoires et observation

Appliquez une pression numérique sur le site de ponction pendant 5 à 10 minutes pour arrêter le saignement, couvrez-le d'un pansement et demandez au patient de ne pas se mouiller dans les 24 heures. Après la biopsie pulmonaire, gardez le patient au lit pendant 2 à 4 heures et examinez une radiographie pulmonaire-pour exclure un pneumothorax retardé ; après une biopsie du foie/des reins, surveillez la tension artérielle, le pouls et les signes abdominaux pendant au moins 4 à 6 heures, en surveillant les saignements intra-abdominaux. Enregistrez les informations sur l’échantillon (nom, site, date, numéro de séquence de ponction).

Conseils opérationnels clés :

L'aiguille de Chiba a des parois minces ; éviter une flexion forcée excessive. Si vous rencontrez une résistance, ne forcez pas l’avancement ; ajustez plutôt l’angle.

Pression négative modérée - : utilisez une pression négative plus faible (2 à 3 ml) pour les poumons et la thyroïde ; éviter une pression négative excessive dans les organes hautement vasculaires pour éviter la contamination du sang.

L’orientation du biseau de la pointe de l’aiguille vers le grand axe de la lésion est bénéfique pour l’échantillonnage.

Sous guidage échographique, faites attention aux artefacts « d'anisotropie » ; utilisez la sonde pour confirmer la véritable position de la pointe de l'aiguille plutôt que le chevauchement des ombres.

Avec un fonctionnement standardisé, l'aiguille Chiba FNA est extrêmement sûre, avec un taux de complications sérieux de<1%, and is the preferred minimally invasive method for obtaining cytological diagnostic evidence.